12 просмотров
Рейтинг статьи
1 звезда2 звезды3 звезды4 звезды5 звезд
Загрузка...

Забор материала для исследования

ЗАБОР МАТЕРИАЛА ДЛЯ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

ОСНОВНЫЕ ПРАКТИЧЕСКИЕ НАВЫКИ ИНФЕКЦИОНИСТА

Бактериологические методы основаны на выделении микробов-возбудителей в чистой культуре путем посевов материала, взятого от больного, на искусственные питательные среды. Кроме того, имея микроб-возбудитель в чистой культуре, можно определять его чувствительность к антибиотикам и химиопрепаратам.

Забор материала для бактериологических исследований должен осуществляться до начала лечения этиотропными средствами, посев необходимо производить немедленно после забора материала непосредственно у постели больного. Если собранный материал нельзя направить в лабораторию, в него добавляют консервирующую смесь. При отсутствии последней материал нужно хранить в холодильнике при температуре +4°С или на льду.

Посев крови лучше всего делать в начальном периоде болезни или в разгаре, сразу после озноба (наиболее выраженная бактериемия). Посев крови производится на жидкие питательные среды — сахарный, сывороточный, желчный бульон и др. Состав среды выбирается в зависимости от биологических особенностей возбудителя предполагаемой у больного инфекции. Чтобы избежать влияния бактерицидных свойств крови, ее необходимо разводить большим количеством среды, примерно в отношении 1:10. Обычно берут 10 — 20 мл крови и засевают в колбу, содержащую 90 — 180 мл среды. Переливать кровь из шприца в колбу надо над пламенем спиртовки, предварительно сняв иглу. Колбу с посевом направляют в лабораторию, а вечером и ночью помещают в термостат. При отсутствии питательной среды кровь собирают в стерильную пробирку с соблюдением таких же правил.

Посевы испражнений производятся при кишечных инфекциях (брюшной тиф, паратифы А и В, дизентерия, сальмонеллезы, эшерихиозы и др.), а также когда возникает подозрение на кишечные инфекции или имеются признаки поражения желудочно-кишечного тракта.

Забор испражнений (2 — 3 г) производится стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой из судна, горшка, специального лотка, а также непосредственно из прямой кишки с помощью ватных тампонов, металлических петель или через трубку ректоскопа. В судне или горшке не должно оставаться следов дезинфицирующего средства, для чего их необходимо тщательно промыть горячей водой. Нужно стремиться взять слизь, гной, фибринные пленки, избегая примеси крови в связи с ее бактерицидным действием. Забор материала из прямой кишки не зависит от числа дефекаций и может быть сделан в любой момент. Для забора материала петлей (тампоном) больного просят лечь на бок с приведенными к животу бедрами и ладонями развести ягодицы. Петля осторожным движением вводится в задний проход на глубину 5 — 6 см и также осторожно вынимается. Затем петля помещается в стерильную пробирку и направляется в лабораторию. Лучше всего сразу же сделать посев материала на питательную среду.

Мочу(20 — 30 мл) собирают в стерильную, плотно закрывающуюся посуду при помощи стерильного катетера после предварительного обмывания половых оргнов с мылом и ополаскивания их стерильным физиологическим раствором. У мужчин допустим сбор мочи при естественном мочеиспускании после туалета наружных половых органов (для посева используется , вторая порция мочи).

Желчь(10 — 20 мл) забирается во время дуоденального зондирования. В отдельные стерильные пробирки собирают все три порции желчи (А, В и С). Конец зонда предварительно обрабатывают спиртом, затем после выделения 1 — 2 мл желчи (не используется для исследования) наполняют пробирки непосредственно через зонд или с помощью стерильного шприца. При наличии кислой реакции (примеси желудочного сока), хлопьев, белесоватого оттенка жидкости материал считается непригодным.

Промывные воды желудка (20 — 50 мл) собираются в стерильные банки после промывания желудка кипяченой водой без добавления натрия гидрокарбоната, калия перманганата и др.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Забор материала для бактериологического исследования

Метод исследования заключается в посеве отделяемого из различных отделов половой системы, а также из всех патологических очагов (язв, папул, везикул, ран и т.п.) на искусственные питательные среды.

Полученный материал можно хранить в холодильнике не более 2-х часов.

Цель:

возбудителя, его биологических свойств при острых и хронических воспалительных процессах гениталий;

определение его чувствительности к антибиотикам.

Противопоказания: кровяные выделения из половых путей.

1. Материальные ресурсы:

§ Стерильная пробирка с сухим ватным тампоном на проволоке (пробирка плотно закрыта пробкой).

Методика выполнения медицинской услуги.

2.1 Подготовка к процедуре:

o Получить информированное согласие пациентки на процедуру.

o Провести психологическую подготовку (успокоить пациентку).

o Постелить пеленку.

o Предложить пациентке лечь на гинекологическое кресло.

o Заполнить направление в лабораторию, подписать пробирку.

o Обработать руки одним из способов.

o Обработать вульву дезинфицирующим раствором.

o Надеть стерильные перчатки.

2.2 Выполнение процедуры:

· С помощью тампона на корнцанге удалить слизь с шейки матки.

· Взять закрытую пробирку в левую руку, а затем правой рукой извлечь тампон из пробирки.

· Ввести тампон на проволоке, не касаясь стенок влагалища, в цервикальный канал, произвести вращательные движения.

· Осторожно, не касаясь наружных поверхностей, поместить тампон в пробирку, плотно закрыть.

· Провести дезинфекцию рабочего места, снять и замочить перчатки, вымыть руки.

Дополнительная информация:

— материал надо брать до начала антибактериальной терапии или через 8 — 10 часов после введения последней дозы антибиотика.

Забор материала на урогенитальные инфекции (ПЦР – диагностика)

Цель:

— выявление заболеваний, передающихся половым путем.

Противопоказания: кровяные выделения из половых путей.

1. Материальные ресурсы:

§ Микропробирка с транспортной средой.

§ 2 одноразовых эндобранша в стерильной упаковке.

Методика выполнения медицинской услуги.

2.1 Подготовка к процедуре:

o Получить информированное согласие пациентки на процедуру.

o Провести психологическую подготовку (успокоить пациентку).

o Постелить пеленку.

o Предложить пациентке лечь на гинекологическое кресло.

o Вскрыть упаковки с эндобраншами.

o Обработать руки одним из способов.

o Обработать наружные половые органы дезинфицирующим раствором.

o Надеть стерильные перчатки.

2.2 Выполнение процедуры:

· Развести половые губы левой рукой.

· Ввести эндобранш в уретру, круговыми движениями получить материал.

· Ввести полученный материал в микропробирку с транспортной средой.

· С помощью тампона на корнцанге удалить слизь с шейки матки.

· С помощью корнцанга извлечь эндобранш.

· Ввести эндобранш в цервикальный канал, с помощью круговых движений получить материал

· Внести полученный материал в ту же пробирку с транспортной средой.

· Заполнить направление в лабораторию.

· Провести дезинфекцию рабочего места, снять и замочить перчатки, вымыть и высушить руки.

Запомните: полученный материал хранится в холодильнике не более 2-х часов.

Забор материала на онкоцитологическое исследование

С помощью цитощетки и шпателя Эйера

Цель:

— выявление рака шейки матки.

Противопоказания: кровяные выделения из половых путей.

Алгоритмы для забора материала на бактериологические исследования

В документированной процедуре изложены правила сбора и транспортирования биологических материалов в лабораторию клинической микробиологии (бактериологии) ГОБУЗ “Мурманская областная клиническая больница им. П. А. Баяндина” в целях повышения качества результатов лабораторных исследований и организации противоэпидемических и профилактических мероприятий, а также профилактики внутрибольничных инфекций у медицинского персонала и пациентов.

Документированная процедура предназначены для использования в МОКБ, а также может использоваться организациями, направляющими заказ на услугу по лабораторной диагностике.

Общие положения

Предложенная техника сбора и транспортирования биологических материалов в ЛКМ МОКБ позволит снизить уровень преаналитической ошибки и повысить качество работы лаборатории по объективизации результатов.

Документированная процедура определяет правила предохранения медицинского персонала и пациентов от инфицирования при сборе и доставке в лаборатории проб биоматериалов, которые могут быть обсеменены бактериями, грибами, вирусами, паразитами.

Общие требования к сбору проб биоматериала для микробиологического исследования

Материал для исследования собирают в достаточном количестве.

Материал должен соответствовать характеру инфекционного процесса.

При сборе материала необходимо использовать только стерильные инструменты и посуду, соблюдая правила асептики для исключения контаминации (загрязнения) биопробы нормальной микрофлорой, т.к. ее наличие приводит к ошибочной трактовке результатов.

При сборе биоматериала медперсонал обязан использовать средства индивидуальной защиты (далее — СИЗ) (перчатки, маска, шапочка, очки и др.).

Необходимо осуществлять сбор биоматериала только в рекомендуемые транспортные среды и контейнеры.

Материал для исследования, по возможности, собирают до начала антибактериальной терапии. При отсутствии такой возможности собирают, непосредственно, перед повторным введением (приемом) препаратов.

В бланке направления на исследование в обязательном порядке указывают наименование принимаемых антибактериальных препаратов.

Не допускается загрязнение наружную поверхность посуды при сборе и доставке проб.

Не допускается загрязнение сопроводительных документов (направлений).

При сборе биоматериала в пробирки, необходимо использовать штативы.

После взятия биоматериала, необходимо сделать запись о процедуре в бланке направления: дату, время взятия, другую информацию.

Правила маркировки проб биоматериала для микробиологического исследования

Все биопробы, поступающие в лабораторию должны пройти процедуру штрих-кодирования.

Наклейки, с нанесенными штрих-кодами, получают в централизованной многофункциональной лаборатории (далее ЦМЛ) МОКБ.

Цель штрих-кодирования — идентификация пациента (на пробирке (контейнере, флаконе) и на бланке должен быть одинаковый номер штрих-кода).

Штрих-код наклеивают на пробирку (контейнер, флакон) строго вертикально цифровой надписью сверху вниз, на имеющуюся наклейку. Необходимо оставить прозрачную зону для контроля состояния биопробы. Штрих-коды, наклеенные неровно, не будут считываться сканерами приборов.

Читать еще:  Впч стоимость анализа

Штрих-код должен быть наклеен ровно и плотно, строго вертикально (длинной стороной вдоль пробирки, контейнера) (рисунок 2).

При маркировке контейнера штрих-код наклеивается непосредственно на сам контейнер, на крышку маркировка не наносится.

Рекомендуется двойная маркировка — помимо штрих-кодирования, на емкость для сбора наносится краткая запись (номер, фамилия, уточнение локализации биоматериала и др.).

Выбор лент со штрих-кодами определяется количеством пробирок, контейнеров для исследований одного пациента, с учетом штрих-кодирования бланка направления (не менее 2-х штрих кодов на ленте: 1-й-на пробирку, 2-й на бланк).

Весь биоматериал маркируется двойными штрих-кодами.

Исключение для исследования:

(63037) «Микробиологическое исследование крови и других стерильных в норме жидкостей на микрофлору»

Необходимо использовать тройной штрих-код:

Правила взятия материала для микробиологических исследований

Материал на исследование забирать только стерильным инструментом и в стерильную посуду, полученную из лаборатории.

МБИ на уреаплазму и микоплазму. Срок готовности 4-7 дней.

  • Брать материал до начала антибактериальной терапии. Не использовать местных антисептиков.
  • Взятие материала из уретры следует проводить не ранее, чем через 2-3 часа после мочеиспускания. Тщательно удалить слизь из цервикального канала.
  • Получение секрета предстательной железы и спермы проводят непосредственно после мочеиспускания.
  • Для забора материала используют транспортную среду, содержащуюся в одноразовой пробирке типа «Эппендорф» (получают в бак. лаборатории и хранят в холодильнике).
  • Исследуемый материал забирают с помощью универсального зонда или ложки Фолькмана и помещают в пробирку с предварительно размороженной транспортной средой.
  • Соскоб должен содержать достаточное количество клеток, т.к. уреаплазма (микоплазма) – микроб, колонизирующий клеточную поверхность.
  • Хранение образцов: — при комнатной температуре 5 часов.

МБИ отделяемого женских гениталий на дисбиоз и B- емолитический стрептококк. Срок готовности 5-7 дней.

  • Материал для посева должен быть взят в стерильную посуду до проведения мануального исследования.
  • Влагалище: материал брать с заднего свода влагалища или с патологически измененных участков слизистой стерильной ложкой Фолькмана.
  • Шейка матки: слизь убрать стерильным ватным тампоном. Брать материал, не касаясь стенок влагалища.
  • Полость матки: при помощи пайпель- кюретки.
  • Цервикальный канал: перед взятием материала из отверстия цервикального канала удалить слизистую пробку. Тампон вводят в канал на 1-1,5 см. и вращательным движением (5-10 сек.) собирают материал. Вынимают тампон не касаясь стенок влагалища.
  • Уретра: Рекомендуется не мочиться в течение часа до взятия пробы. Стерильный тампон вводят в уретру на глубину 1,5 см. Материал собирают вращательным движением.
  • Материал помещают в пробирку с транспортной средой.
  • Длительное хранение материала (до 48 часов) — в специальных транспортных средах (Амиеса, Стюарта).

МБИ отделяемого мужских гениталий. Срок готовности 3-4 дня.

  • Уретра: Рекомендуется не мочиться в течение часа до взятия пробы. Стерильный тампон вводят в уретру на глубину 3-4 см. Материал собирают вращательным движением.
  • Эякулят: для бактериологического исследования собирается в стерильный пластиковый одноразовый контейнер с широким горлом путем мастурбации (контейнер можно получить в лаборатории). Требуется соблюдение правил асептики!
  • Секрет предстательной железы: перед забором секрета предстательной железы рекомендуется половое воздержание в течение 2 дней. Забор секрета предстательной железы для бактериологического исследования осуществляет врач, после предварительного массажа простаты. Материал помещают в стерильную пробирку.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 5-6 часов
  • Заморозка не допускается

МБИ мочи. Срок готовности 3 дня.

  • Мочу для исследования следует брать до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами.
  • Исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной утренней мочи, взятой в количестве 3-5 мл в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов (наружные половые органы обрабатывают тампоном с теплой мыльной водой, высушивают салфеткой) Первую порцию не брать, среднюю порцию (3-5 мл) собрать в стерильный контейнер. Требуется соблюдение правил асептики!
  • Доставка материала — в течение 2 часов
  • Длительное хранение материала: в холодильной камере в течение 18 часов

МБИ отделяемого женских гениталий (в т.ч. Str.agalactiae).

  • Срок готовности 5-7 дней.
  • Материал для посева должен быть взят в стерильную посуду до проведения мануального исследования.
  • Влагалище: материал брать с заднего свода влагалища или с патологически- измененных участков слизистой.
  • Шейка матки: слизь убрать стерильным ватным тампоном. Брать материал, не касаясь стенок влагалища.
  • Полость матки: при помощи пайпель-кюретки.
  • Исследуемый материал забирают с помощью универсального зонда или ложки Фолькмана и помещают в пробирку с транспортной средой.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала (до 48 часов) — в специальных транспортных средах (Амиеса, Стюарта).

МБИ отделяемого зева. Срок готовности 3-4 дня.

  • Материал для исследования берут натощак или через 2 часа после приема пищи (прополоскав полость рта кипяченой водой или стерильным физиологическим раствором). Забор пробы производят стерильным ватным тампоном со слизистой миндалин, задней стенки глотки и других воспаленных участков. При выполнении процедуры нельзя прикасаться к языку и слизистой щек. Тампон помещают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала (до 48 часов) — в специальных транспортных средах (Амиеса, Стюарта).

МБИ отделяемого носа. Срок готовности 3-4 дня.

  • Материал берут стерильным ватным тампоном. Вводят тампон в носовой ход до упора на уровне носовой раковины (2-2,5 см), вращательными движениями собирают материал, помещают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала (до 48 часов) — в специальных транспортных средах (Амиеса, Стюарта).

МБИ мокроты. Срок готовности 5-7 дней.

  • Исследуют свободно откашливаемую мокроту, утреннюю среднюю порцию, взятую натощак.
  • Пациент предварительно должен прополоскать зев и полость рта кипяченой водой или раствором соды (1 ч.л. на ст. воды).
  • Мокроту собирают в стерильную посуду с завинчивающейся крышкой, если мокрота отходит плохо, накануне пациенту дают отхаркивающее средство.
  • Доставка: в течение 1,5-2 часа от момента ее получения.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 6 часов.

МБИ отделяемого ран. Срок готовности 3-4 дня.

  • Пробу отбирают строго с места локализации очага, не захватывая близлежащие здоровые ткани.
  • Кожу вокруг раны обрабатывают 70% спиртом или другим антисептиком, удаляют гной, некротические массы.
  • Тампон перемещают от центра к периферии вращательными движениями. При наличии в ране дренажей материал берут при помощи шприца.
  • Доставка: в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала (до 48 часов) — в специальных транспортных средах (Амиеса, Стюарта).

МБИ грудного молока. Срок готовности 3-4 дня.

  • Забор грудного молока проводится только до кормления ребенка или через два часа после его кормления грудью. Обследуемая пациентка обмывает левую и правую грудную железу теплой водой с мылом и насухо вытирает чистым полотенцем. Поверхность сосков и кончики пальцев обрабатывает ваткой, умеренно смоченной 70 % этиловым спиртом. Первая порция грудного молока, приблизительно в количестве 0,5 мл, сбрасывается. Затем, не касаясь соска руками, женщина сцеживает 0,5 – 1 мл молока из каждой железы в отдельный стерильный контейнер (контейнеры можно получить в лаборатории). Недопустимо длительное (более двух часов) хранение или транспортировка грудного молока при комнатной температуре. Следствием этого может быть размножение микрофлоры молока и, как результат этого, неправильные результаты при количественном бактериологическом исследовании.
  • При регистрации заказа необходимо указать: 1) материал из какой грудной железы (правой или левой) находится в каждом контейнере; 2) из какой железы последний раз кормили ребенка.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 5-6 часов

МБИ эякулята. Срок готовности 3-4 дня.

  • Эякулят для бактериологического исследования собирается в стерильный пластиковый одноразовый контейнер с широким горлом путем мастурбации (контейнер можно получить в лаборатории). Требуется соблюдение правил асептики!
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 5-6 часов

МБИ кала. Срок готовности 5-7 дней

  • Для исследований предпочтительно использовать утреннюю порцию фекалий. Испражнения отбираются специальной ложечкой, вмонтированной в крышку стерильного пластикового одноразового контейнера (контейнер можно получить в регистратуре) в объеме равном приблизительно ½ чайной ложки из средней части фекальной массы. Следует избегать попадания кусочков непереваренной пищи и мочи. Некоторые пациенты не в состоянии опорожнить кишечник в утренние часы, в этом случае забор материала производится вечером, а контейнер с испражнениями хранится в холодильнике до следующего дня, но не замораживается. Недопустимо длительное (более двух – трех часов) хранение или транспортировка фекалий при комнатной температуре. Следствием этого могут быть существенные сдвиги в микрофлоре испражнений и, как результат этого, неправильные результаты при бактериологическом исследовании.
  • Внимание: Для получения достоверного результата материал для исследования берется до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения, но не ранее двух недель после ее окончания. Аналогичной тактики следует придерживаться при лечении пациентов эубиотиками (бифидумбактерин, лактобактерин, колибактерин и др.). Если вы проводите исследование на фоне приема эубиотиков или антибактериальной терапии, укажите это в момент регистрации.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более не более 24 часов.
Читать еще:  Гистология что за анализ

МБИ кала на кишечную группу. Срок готовности 5-7 дней.

  • Забор мазков из прямой кишки для бактериологического исследования на кишечную группу проводится в одноразовый контейнер со средой Амиеса (контейнер можно получить в лаборатории) Специальной подготовки не требуется.
  • Доставка материала — в течение 12 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 24 часов. Заморозка не допускается.

МБИ секрета предстательной железы. Срок готовности 3-4 дня.

  • Перед забором секрета предстательной железы рекомендуется половое воздержание в течение 2 дней. Забор секрета предстательной железы для бактериологического исследования осуществляет врач, после предварительного массажа простаты. Материал помещают в стерильную пробирку.
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более не более 48 часов. Заморозка не допускается.

МБИ синовиальной жидкости, пунктатов, содержимого абсцессов. Срок готовности 5-7 дней.

  • Забор материала осуществляется врачом — специалистом в условиях перевязочной (операционной) с соблюдением правил асептики. Материал помещают в стерильную пластиковую посуду (контейнер можно получить в лаборатории) или в специальную транспортную среду (Амиеса, Стюарта).
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 5-6 часов, в специальных транспортных средах (Амиеса, Стюарта) до 24 часов Заморозка не допускается.

МБИ желчи. Срок готовности 5-7 дней.

  • Желчь для бактериологического исследования собирает врач при зондировании, отдельно, по порциям А, В и С в три стерильные пробирки, либо во время операции с помощью шприца в одну пробирку, соблюдая правила асептики (в лаборатории эти процедуры не выполняются).
  • Доставка материала — в течение 2 часов.
  • Длительное хранение материала: в холодильнике не более 5-6 часов. Заморозка не допускается

МБИ на менингококковую инфекцию. Срок готовности 10 дней.

  • Забор материала осуществляется врачом – специалистом.
  • Исследуемый материал – слизь с задней стенки глотки – берут натощак или через 3-4 часа после еды стерильным ватным тампоном в транспортную среду Амиеса. Предварительно достав контейнер из холодильника (если среда хранится в холодильнике). Материал берут с обязательным надавливанием шпателем на корень языка. Тампон вводят концом кверху за мягкое небо в носоглотку и проводят 2 — 3 раза по задней стенке. При извлечении тампон не должен касаться зубов, слизистой щек, языка и язычка.
  • Доставка: в течение 1,5-2 часа от момента ее получения. Тщательно защищая среду с посеянным материалом от охлаждения, в зимнее время применяют грелку (35-40°С) или доставляют в руке при температуре 37°С.

Работаем с 1999 года

Более 20 клиник по Нижнему Новгороду и области

Собственная бактериологическая лаборатория

Более 1000 анализов

База кафедры клинической лабораторной диагностики НижГМА

Авторские права © 1999 — 2020 Лаборатория «Тонус». Все права защищены.

Правила забора материала на исследование из различных органов и систем

Забор материала с кожи больного. При появлении гнойно-воспалительного процесса в ране, раневое отделяемое, гной, кусочки инфицированных тканей (грануляции, мышцы и т.п.) подвергают микробиологическому исследованию.

Исследуемый материал чаще всего содержит большое количество микроорганизмов, являющихся возбудителями раневых и гнойных инфекций. Однако, открытые раны часто бывают контаминированы различными бактериями, что затрудняет выделение этиологического агента.

Взятие материала производит лечащий врач при соблюдении правил асептики. При взятии материала из раны стерильным ватным тампоном кожу вокруг раны предварительно обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит и гной удаляют стерильной салфеткой. Взятие материала стерильным тампоном производят круговыми вращательными движениями от центра к периферии поверхности раны. Материал берут двумя тампонами, один из которых используют для микроскопии, а другой — для посева.

При наличии в ране дренажей для активной аспирации отделяемого последнего отсасывают шприцем и в количестве 1 – 2 мл и помещают в стерильную пробирку. Кусочки тканей, гной, промывную жидкость из дренажей также берут в стерильные пробирки при соблюдении всех правил асептики.

Исследуемый материал необходимо доставить в микробиологическую лабораторию в течение одного часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более двух часов.

Забот материала их уха.При поражении наружного уха проводят обработку кожи 70% спиртом с последующим промыванием физиологическим раствором, затем отделяемое из очага собирают на стерильный ватный тампон.

При поражениях среднего и внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранный в стерильную посуду.

Забор материала из глаза. Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики. Не менее чем за 5 – 6 часов до исследования отменяют все медикаменты и процедуры. Взятие материала производят врач — окулист.

Конъюнктива. Отделяемое конъюнктивы берут предварительно прожженной в пламени спиртовки и остуженной платиновой петлей или стеклянными стерильными палочками. При наличии обильного гнойного отделяемого используют стерильные ватные тампоны, которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).

Край век. Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.

Роговица.Материал на исследование, после обезболивания, можно взять платиновой петлей или другим подходящим инструментом. Если больной применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность влажным тампоном.

Забор материал из дыхательных путей. Материалом для изучения этиологии заболеваний дыхательных путей служат: отделяемое зева, мокрота, содержимое бронхов, полученное при бронхоскопии или при отсасывании через трахеостому (у больных, находящихся на аппаратном дыхании), экссудаты из плевральной полости, резецированные ткани и др. Материал собирают с соблюдением правил асептики в предварительно простерилизованные баночки или пробирки и доставляют в лабораторию. Хранение материала способствует размножению сапрофитной микрофлоры, развитию процессов гниения и брожения, что искажает результаты анализа. Интервал между взятием материала и его посевом не должен превышать 1 – 2 часа.

Мокроту (но не слюну) необходимо собирать из нижних отделов дыхательных путей.

Общий анализ мокроты – собирают утреннюю мокроту не менее 1 мл в стерильную стеклянную посуду, после чистки зубов и полоскания полости рта.

Промывные воды бронхов. При отсутствии или скудном количестве мокроты производят смыв из бронхов физиологическим раствором, однако, при этом микробиологическая ценность исследования снижается из-за разведения секрета (часто значительно) и бактерицидного действия раствора на чувствительные микроорганизмы, поэтому нередко концентрация бактерий в бронхиальном содержимом в 10 – 1000 раз ниже, чем в мокроте. Кроме того, трудоемкость эндоскопического взятия материала и тяжесть манипуляции для больного ограничивает проведение повторных исследований в динамике заболевания.

Пунктат инфильтрата или абсцесса легкого. Исследование пунктата наиболее эффективно до прорыва инфильтрата или абсцесса в дренирующий бронх. При трансторакальной пункции получают материал непосредственно из очага поражения и избегают его обсеменения посторонней микрофлорой.

Пунктат плевральной полости. Экссудат из плевральной полости получают с соблюдением правил асептики при проведении пункции плевральной полости.

Забор материала из носа. Материал для исследования из полости носа берут стерильным тампоном.

Забор материала из полости рота. Материал для исследования из верхних дыхательных путей берут тампоном: сначала с каждой миндалины, а затем с задней стенки глотки. Посев должен быть сделан сразу же после взятия материала.

Исследуемый материал из полости рта берут натощак или через 2 часа после приема пищи и питья стерильным ватным тампоном или гладилкой. Забор производиться со слизистых оболочек щек, десен, языка, выходных отверстий протоков слюнных желез. При наличии пленки на слизистой оболочке щек ее снимают стерильным пинцетом, а затем забирают материал стерильным тампоном.

Забор материала из желудочно-кишечного тракта. Для исследования содержимого желудка материал собирают при зондировании, также можно брать на исследование и рвотные массы; их собирают в не стерильную посуду. При необходимости для получения биоптата слизистой оболочки желудка делают ФГДС и берут на исследование кусочки слизистой оболочки. Материалом для исследования из двенадцати перстной кишки служит биоптат слизистой оболочки, полученный при ФГДС.

При заболеваниях толстого кишечника чаще всего на исследование берут фекалии. Если каловые массы оформленные, материал берут со стерильного судна из нескольких мест стеклянной, деревянной или металлической палочкой и помещают в стеклянный или пластмассовый сосуд. Из прямой кишки материал берут тампоном или пластмассовой трубочкой с отверстием в боковой стенке. Исследование следует проводить в течение 1 часа после взятия. Если это невозможно, пробы можно сохранять при температуре 0 0 С около суток.

Читать еще:  Как выглядит опухоль на ультразвуковом исследовании

При заболеваниях печени и желчного пузыря на исследование забирают желчь, которую собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно порции А, В и С в три стерильные пробирки, либо во время операции с помощью шприца в одну пробирку, соблюдая правила асептики. Полученные порции желчи доставляют в лабораторию не позднее 1 – 2 часов от момента взятия, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении.

Забор материала из мочи. Для исследования берут «среднюю» порцию утренней мочи, собранную в стерильную посуду, в количестве 5-10 мл. Утренняя моча обычно задерживается в течение нескольких часов в мочевом пузыре, что способствует увеличению микробного числа. Моча отдельно может быть собрана из правой и левой почек и мочеточников (0,51,0мл) катетером при проведении цистоскопии. Катетеризация мочевого пузыря для рутинного исследования не применяется, так как она может привести к инфицированию мочевых путей. К катетеризации мочевого пузыря прибегают в некоторых случаях для уточнения локализации инфекции – в мочевом пузыре или в почках. С этой целью мочевой пузырь опорожняют катетером и промывают раствором антибиотика, после чего с интервалом в 10 минут берут пробы мочи для исследования. Если инфекция локализуется в почках, микроорганизмы содержатся во всех порциях мочи. При инфекции мочевого пузыря вторая порция мочи остается стерильной.

В некоторых случаях делают надлобковую пункцию мочевого пузыря, при которой получают наиболее достоверные результаты.

Материал для исследования следует брать до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения.

Содержащиеся в моче микробы быстро размножаются при комнатной температуре, что может дать ложные результаты при определении степени бактериурии. В связи с этим, от момента взятия пробы мочи до начала ее исследования в лаборатории должно проходить не более 1 – 2 часов при хранении при комнатной температуре и не более суток – при хранении в холодильнике.

Забор материала из уретры и влагалища. У мужчин отделяемое уретры берут ложкой Фолькмана или специальным тампоном. Желательно, чтобы перед этой процедурой пациент не мочился. Также можно взять на исследование мазки со слизистой оболочки уретры, эякулят, пунктат придатка яичка и секрет предстательной железы.

У женщин материал берут из уретры, цервикального канала, а также проксимальной трети и заднего свода влагалища ложкой Фолькмана, ватным тампоном или пипеткой. Материал для исследования необходимо немедленно доставить в лабораторию, так как во внешней среде микроорганизмы быстро погибают.

Взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог при подозрении на инфекционную природу патологического процесса.

Взятие материала для лабораторных исследований
Taking the material for laboratory examination

Какое значение имеет правильный забор материал

Правильный забор биоматериала для лабораторного исследования имеет чрезвычайно важное значение.Какие не были ли бы точные методы диагностики (ПЦР,культуральное исследование), но если в пробу для исследования не попали возбудители половых инфекций,то результат исследования будет отрицательным.Особенно важен правильный забор биоматериала у женщин,такак ряд инфекций (гонококковая,хламидийная) в подавляющем большинстве случаев локализуются в цервикальном канале и возбудители этих инфекций могут отсутствовать во влагалище.В некоторых случаях возможна локализация возбудителей половых инфекций в придатках яичка,предстательной железе у мужчин при отсутствии их в мочеиспускательном канале.

Нужна ли провокация перед забором материала

В последние годы появились данные о полной неэффективности различного вида провокаций для более точного определения возбудителя.В контрольных группах (где провокация не применялась) выявляемость микроорганизмов была такой же как в группах с применением комбинированной провокации.
В мировой медицине методы провокации не применяются для диагностики половых инфекций уже более 30 лет.Методы провокации не включены в перечень лечебно-диагностических мероприятий при гонококковой инфекции в России (приказ МЗ РФ № 176 от 28.02.2005 Об утверждении стандарта медицинской помощи больным гонококковой инфекцией).

Ради исторической справки привожу какие методы провокации применялись ранее и применяются сейчас врачами,убежденными в их эффективности.

  • биологическая: введение гоновакцины (500 млн. микробных тел) взрослым однократно, внутримышечно, детям старше 3-х лет- 100-200 млн. микробных тел.Детям до 3 лет не рекомендуется введение гоновакцины;
  • термическая: применение в течение 3-х дней диатермии с абдоминально-вагинально-сакральным расположением электродов по 30,40,50 мин или индуктотермии по 10,15,20 мин. Следует производить забор отделяемого из уретры, цервикального канала и прямой кишки через один час после каждого прогревания;
  • механическая: наложение металлического колпачка на шейку матки женщин на 4 часа, проведение массажа уретры мужчин на буже в течение 10 мин;
  • алиментарная: употребление соленой, острой пищи и алкоголя за 24 часа до исследования.

Какие инструменты используют для забора материала

Для забора биоматериала из мочеполовых органов используются специальные инструменты.

  • Для забора материала для микроскопического исследования используется ложка Фолькмана
  • Для забора материала для цитологического исследования по Папаниколау — шпатель Эйра или цитологическая щетка
  • Для забора на бактериологического исследование бактериологичесая петля и вагинальные тампоны
  • Для исследования методом ПЦР — специальные зонды и вагинальные тампоны.

Как проводится забор материала у женщин

Материал для исследования у женщин следует брать перед менструацией или через 1-2 дня после ее окончания. Рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 3-4 часов и половых сношений перед взятием материала. Женщины в день явки на обследование не должны спринцеваться и проводить туалет наружных половых органов. За 5-7 дней до забора материала необходимо прекратить прием химиопрепаратов и лечебные процедуры. Исследуемый материал должен быть без примесей крови.Забор материала проводится во время осмотра влагалищными зеркалами специальными инструментами в зависимости от вида исследования.Обычно материал забирается из заднего свода влагалища,цервикального канала,уретры и прямой кишки.

Как проводится забор материала у мужчин

Рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 3-4 часов. За 5-7 дней до забора материала необходимо прекратить прием химиопрепаратов и лечебные процедуры.
Материал забирается специальными иструментами,в зависимости от вида исследования,из передней уретры.Обычная глубина забора 1-3 см. от наружного отверстия уретры.В некоторых случаях проводится забор материала после предварительного массажа предстательной железы.После забора материала возможны временные явления уретрита из-за механического повреждения слизистой уретры.

Какие особенности забора из различных органов

Уретра — рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов и более перед взятием материала. Перед взятием материала наружное отверстие уретры необходимо обработать тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором. При наличии гнойных выделений соскоб надо брать либо сразу, либо через 15-20 мин после мочеиспускания, при отсутствии выделений следует провести массаж уретры с помощью зонда для взятия материал У женщин перед введением зонда в уретру необходимо провести ее массаж о лобковое сочленение В уретру женщин зонд ввести на глубину 1-1,5см, мужчин — на 3-4см и сделать несколько вращательных движений. У детей материал берут только с наружного отверстия уретры.

Вульва и преддверие влагалища — отделяемое берут стерильным ватным тампоном. При воспалении бартолиниевых желез производят их пункцию

Влагалище — материал для исследования берут стерильным зондом из заднего свода или с патологически измененных участков слизистой

Цервикальный канал — перед взятием материала необходимо удаление ватным тампоном слизи и обработка шейки матки стерильным физиологическим раствором Зонд ввести в цервикальный канал на глубину 0,5-1,5 см. При наличии эрозий цервикального канала необходимо их обработать стерильным физиологическим раствором, и материал следует брать с границы здоровой и измененной ткани.При извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища

Матка — материал берется с помощью специальных инструментов типа шприца-аспиратора,имеющего на зонде покрытие

Придатки матки — при воспалительном процессе в придатках матки материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки органов) берется либо при оперативном вмешательстве, либо при проведении диагностической пункции в малом тазу, проводимой через влагалищные своды

Моча — исследование мочи нужно проводить до начала антибактериальной терапии. Моча здорового человека стерильна Утром после тщательного туалета наружных половых органов в стерильную посуду собирают среднюю порцию свободно выпущенной мочи в количестве 3-5 мл. При подозрении на простатит получают 4 пробы: 3 порции мочи (первая и средняя порции при самопроизвольном мочеиспускании и последнюю через 5-10 минут после массажа предстательной железы) и секрет предстательной железы при массаже При исследовании мочи на наличие возбудителей урогенитальных инфекций проба может сохраняться до 18 часов при +4° С.

Секрет предстательной железы — после окончания массажа предстательной железы сок в количестве 0,5-1 мл собирают в одноразовую сухую пробирку. При невозможности получить сок, сразу после массажа собирают первую порцию мочи (в которой содержится сок предстательной железы) в количестве 10 мл

Ссылка на основную публикацию
Adblock
detector